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产品介绍

STEP-PTM-50植物在线光合生理生态监测系统在原有STEP-PTM-48A基础上升级而来，可长期、自动监测植物的光合速率、蒸腾速率，植物生理生长状态，环境因子，从而得到植物的全面的信息。

STEP-PTM-50植物在线光合生理生态监测系统具备4个自动开合的叶室，可在20秒内获得叶片的CO2、H2O交 换速率。标配1个数字通道连接RTH-50多功能传感器，可测定总辐射、光合有效辐射、空气温湿度、露点温度等。分析单元升级为双通道测量，新款的PTM-50由之前的1个分析器分时测量，升级为2个独立分析器，实时测量参比气和样品气的浓度差，增强了对环境CO2、H2O波动的耐受能力，数据更加稳定可靠。可选的植物生理指标监测传感器以无线方式传送数据，传感器可与PC独立连接，布局更为灵活。可同时配备叶绿素荧光自动监测模块进行叶绿素荧光实时监测。系统通过2.4GHz RF和3G实现无线通讯和网络化。

应用领域

应用于植物生理学、生态学、农学、园艺学、作物学、设施农业、节水农业等研究领域

比较不同物种、不同品种的差异

比较不同处理、不同栽培条件对植物的影响

研究植物光合、蒸腾、生长的限制因子

研究生长环境对植物的影响及植物对环境变化的响应

产品测定参数

植株净光合、总光合、光呼吸、暗呼吸

蒸腾速率

气孔导度（配合叶温传感器）

参比和叶室CO₂浓度

参比和叶室H₂O浓度

叶室空气流量

水汽压饱和亏

CO₂同化速率

茎流量、茎杆果实微变化、空气温湿度、土壤温湿度、PAR等

产品配置

1×PTM-50系统

1×电源适配器

1×蓄电池连接线

1×RTH-50多功能传感器

4×LC-10R叶室，测量面积10 cm2

4×4米气体连接管

2×1.5米不锈钢支架

选配无线传感器

配套软件

英文说明书

技术参数

工作方式：自动持续测量

叶室取样时间：20s

CO2 测量原理：双通道非色散红外气体分析器

CO2 浓度测量范围：0-1000 ppm

CO2 交换速率的额定测量范围：-70-70 μmolCO2m-2 s-1

H2O测量原理：集成型空气温度和湿度传感器

叶室空气流速：0.25L/min

RTH-50 多功能传感器：温度-10到60℃；相对湿度：3-100%RH；光合有效辐射：0-2500μmolm-2s-1

测量间隔：5-120分钟用户自定义

存储容量：1200条数据，采样频率为30分钟时可存储25天

连接管的标准长度：4m

电源：9 到 24 Vdc

通讯方式：2.4GHz RF和3G网络通讯

环境防护级别：IP55

可选配叶室和传感器

1. LC-10R 透明叶室：圆形叶室，面积10cm

2 ，空气流速0.23±0.05L/min 2. LC-10S 透明叶室：矩形叶室，13×77mm，10cm2 ，空气流速0.23±0.05L/min

3. MP110叶绿素荧光自动监测模块，可自动监测Ft、QY等叶绿素荧光参数

4. LT-1 叶面温度传感器：测量范围0-50℃

5. LT-4 叶面温度传感器：4个LT-1传感器集成，用以估算叶面平均温度

6. LT-IRz 红外温度传感器：范围0-60℃，视野范围5:1

7. SF-4 植物茎流传感器：最大10ml/h，适用于直径2-5mm茎杆

8. SF-5 植物茎流传感器：最大10ml/h，适用于直径4-10mm茎杆

9. SD-5 茎杆微变化传感器：行程0到5mm，适用于直径5-25mm茎杆

10. SD-6 茎杆微变化传感器：行程0到5mm，适用于直径2-7cm茎杆

11. SD-10 茎杆微变化传感器：行程0到10mm，适用于直径2-7cm茎杆

12. DE-1 树干生长传感器：行程0到10mm，适用于直径6cm以上树干

13. FI-L 大型果实生长传感器：范围30到160mm，适用于圆形果实

14. FI-M 中型果实生长传感器：范围15到90mm，适用于圆形果实

15. FI-S 小型果实生长传感器：范围7到45mm，适用于圆形果实

16. FI-XS 微型果实生长传感器：行程0到10mm，适用于直径4到30mm的圆形果实

17. SA-20 株高传感器：范围0到50cm

18. SMTE 土壤水分、温度、电导率三参数传感器：0 到 100% vol.% WC ; -40 到 50°C ; 0 到15 dS/m

19. PIR-1 光合有效辐射传感器：波长400到700nm，光强0到2500μmolm-1s-1

20. TIR-4 总辐射传感器：波长300到3000nm，辐射0到1200W/m2

21. ST-21 土壤温度传感器：范围0到50°C

22. LWS-2 叶片湿度传感器：产生与传感器表面湿度成比例的指示信号

发表文献

   1.Specific features of photorespiration in photosynthetically active organs of C3 plants, NS Balaur, et al. 2013, Russian Journal of Plant Physiology, 60(2): 184-192

   2.Online Monitoring and Analysis of Plant Photosynthetic Physiology and Environmental Factors, Zhao Hui Jiang et al., 2012, Applied Mechanics and Materials, 241-244, 75

   3.Mycorrhizal association between the desert truffle Terfezia boudieri and Helianthemum sessiliflorum alters plant physiology and fitness to arid conditions, Turgeman T. et al. 2011, Mycorrhiza, 21(7): 623-630

   4.Study on compensatory effects of two differential genotypic maize in water stress and re-watering during Filling stage, Yan Y.L. et al. 2011, New Technology of Agricultural Engineering (ICAE), 2011 International Conference

   5.FPGA-based Fused Smart Sensor for Real-Time Plant-Transpiration Dynamic Estimation, Millan-Almaraz J.R. et al. 2010, Sensors, 10(9): 8316-8331

   6.Effect of elevated CO2 on vegetative and reproductive growth characteristics of the CAM plants Hylocereus undatus and Selenicereus megalanthus，Weiss I. et al. 2010, Scientia Horticulturae，123(4): 531-536

   7.Novel technique for component monitoring of CO2 exchange in plants, Balaur N.S. et al. 2009, Russian Journal of Plant Physiology, 56 (3): 423-427

   8.Net CO2 uptake rates for Hylocereus undatus and Selenicereus megalanthus under field conditions: Drought influence and a novel method for analyzing temperature dependence, Ben –Asher. J. et al. 2006, Photosynthetica, 44(2): 181-186

宋宗河, 郑文寅 & 张学昆. (2011). 甘蓝型油菜耐旱相关性状的主成分分析及综合评价. 中国农业科学 44,  1775–1787.

李婷婷, 江朝晖, 闵文芳, 姜贯杨 & 饶元. (2016).基于基因表达式编程的番茄叶片CO2交换率建模与预测. 浙江农业 学报 28, 1616–1623.